Как уже отмечалось, доступность районов конститутивного гетерохроматина в клетках цитотрофобласта для рестрикции эндонуклеазами в значительной степени определяется их деконденсированным состоянием. Учитывая наличие корреляции между конденсацией и метилированием [899], есть основания предполагать, что гипометилированное состояние хромосом должно сопровождаться их деконденсацией. В таком случае, морфометрические характеристики отдельных сегментов хромосом могут быть использованы в качестве критерия для оценки состояния при различных условиях. В этой связи представлялось целесообразным охарактеризовать морфометрические особенности гетерохроматиновых районов хромосом у эмбрионов и плодов человека разных сроков развития.
Единичные работы, выполненные на культурах фибробластов и лимфоцитов человека, показали наличие определенной динамики линейных размеров и селективную нейтральность гетерохроматиновых районов в эмбриогенезе человека [2, 117]. Между тем, условия клеточных культур вряд ли адекватны для суждения о нативном состоянии гетерохроматина в эмбриональных клетках. Такая информация может быть получена только при изучении гетерохроматина in situ или на прямых хромосомных препаратах.
Нами проведено морфометрическое исследование гетерохроматиновых районов хромосом 1, 9 и 16 в спонтанно делящихся клетках цитотрофобласта хориона у эмбрионов и плодов человека 6-20 недель развития. Значительная вариабельность размеров блоков гетерохроматина на «прямых» препаратах не вызывает сомнения. Эти различия особенно резко выражены при сравнении гетерохроматиновых блоков хромосом из хориона с вариантами qh+ в культурах лимфоцитов пуповинной крови плода (табл. 10.6). Обращает на себя внимание факт высокой частоты варианта 9qh+ в клетках цитотрофобласта по сравнению с лимфоцитами, а также тенденция к снижению частоты вариантов qh+ для каждой хромосомы по мере развития плода.
Таблица 10.6. Частоты увеличенных гетерохроматиновых блоков * (qh+) хромосом 1, 9, 16у эмбрионов и плодов человека на разных сроках эмбрионального развития

Срок
развития,
нед.

Всего
клеток

Хромосома 1

Хромосома 9

Хромосома 16

Число qh+

%

Число qh+

%

Число
qh+

%

Клетки цитотрофобласта (прямые препараты)

12

111

18

16,2 %

57

51,5 %

16

15,3 %

14-15

82

21

25,6 %

41

50 %

13

15,9 %

18-20

199

29

14,6 %

89

44,7 %

27

14,6 %

ФГА-стимулированные лимфоциты пуповинной крови

20-29

80

10

12,5 %

14

17,5 %

8

10 %

* Размеры блоков оценивались визуально на препаратах метафазных хромосом, окрашенных флуорохромом Hoechst 33258 с контрастированием актиномицином D. Препараты приготовлены стандартными методами из материала, полученного с целью пренатальной диагностики хромосомных болезней

Морфометрические исследования гетерохроматиновых районов проведены на препаратах хориона плодов 6-20 недель развития. Абсолютные и относительные размеры С-блоков хромосом 1, 9 и 16 измеряли на проекции с изображений метафазных пластинок, окрашенных С-методом [148]. От каждого эмбриона анализировали по 10-20 метафазных пластинок в интервале спирализации хромосомы 2 от 6,4 до 11 мкм (в этом интервале, согласно коэффициентам линейной регрессии, не было выявлено отклонений от линейной зависимости).
Характер распределения абсолютных и относительных размеров С-блоков для всех хромосом соответствовал нормальному. Средние значения размеров С-блоков варьировали для каждой хромосомы и не зависели от стадии развития (табл.10.7).
При сравнении полигонов частот абсолютных размеров С-блоков хромосомы 1 обнаружено смещение распределения в сторону больших значений для эмбрионов раннего (6-8 недель) по отношению к поздним (18-20 недель) срокам развития (рис. 10.33, а) Для гетерохроматиновых районов хромосом 9 и 16 такая зависимость не прослеживается (табл.10.6).
Морфометрический анализ этих же сегментов хромосом 1, 9 и 16 в клетках цитотрофобласта был продолжен на препаратах, окрашенных H33258/AcD. Выявляемые при таком способе окраски гетерохроматиновые Q-сегменты исследовали при помощи полуавтомата-
Таблица 10.7. Абсолютные размеры С-сегментов хромосом 1, 9 и 16 в клетках цито- трофобласта на разных стадиях эмбрионального развития

Хромосома

Срок развития, нед.

Число
эмбрионов

Число
хромосом

Размер С-сегментов Х ± S х, мкм

1

6-8

9

18

1,61 ±0,07

1

12

4

8

1,48 ± 0,08

1

14-15

5

10

1,64 ±0,14

1

18-20

7

14

1,39 ± 0,06

9

6-8

4

8

1,24 ±0,04

9

12

4

8

1,29 ±0,13

9

14-15

4

8

1,24 ±0,10

9

18-20

5

10

1,31 ±0,09

16

6-8

4

8

1,09 ± 0,03

16

12

4

8

1,03 ± 0,05

16

14-15

4

8

1,16 ± 0,07

16

18-20

5

10

1,08 ± 0,03






Рис. 10.33. Распределение абсолютных (а) и относительных (б) размеров района 1qh метафазных хромосом в клетках цитотрофобласта хор-иона и плаценты ческой системы анализа изображений с программным обеспечением, позволяющим точно измерять линейные размеры сегментов хромосом (Видео-Тест, Карио 1.5). Для исключения межклеточного полиморфизма от каждого из 129 эмбрионов исследовали по 1 метафазной пластинке, на которых измеряли длину хромосом и соответствующих Q-блоков. Уточнение границ блоков проводили по экстремумам производной кривой яркости. Длину гетерохроматинового сегмента определяли в процентах от длины хромосомы.
Установлено, что характер распределения размеров Q-сегментов гетерохроматина хромосом 1, 9, 16 достоверно отличается от нормального (Гауссового) распределения (tAs gt; 3) и аналогичен полученному на первом этапе исследований С-сегментов (рис. 10.33, б). Вместе с тем,

интересно отметить, что при статистической обработке с использованием дисперсионного анализа двухфакторных неравномерных комплексов зависимость размеров гетерохроматиновых районов от стадии развития оказалась значимой только для блоков 9qh и 16qh (F = 1,00, P gt; 0,05; F = 10,82, P lt; 0,05; F = 3,10, P lt; 0,01 соответственно). Размеры этих же блоков достоверно отличались в цитотрофобласте и тканях зародышевого происхождения у эмбрионов 6-10 недель развития (табл. 10.8). Полученные нами результаты подтверждают полученные ранее данные об увеличении размеров С-блоков хромосом 1, 9 и 16 в экстраэмбриональных тканях по сравнению с эмбриональными [119].
Учитывая очевидные недостатки морфометрического подхода, обусловленные выраженными межиндивидуальными различиями размеров гетерохроматиновых блоков, зависимости их размеров от степени спи- рализации хромосом и способов их окраски, а также от субъективных факторов (способы измерений, пределы допускаемых погрешностей и т. д.), данный подход едва ли может рассматриваться как перспектив-
Таблица 10.8. Сравнение относительных размеров Q-гетерохроматиновых блоков в различных тканях плода (Т-критерий Уайта)

Хромосома

№ эмбриона

Число проанализированных хромосом

Т
э

Эмбриональные
клетки

Клетки
цитотрофобласта

1

1

24

5

23,5*

1

2

30

2

23,5**

1

3

16

7

119,5 **

1

4

11

2

15 5 ***

1

5

1

4

2 ***

1

6

10

4

23,5 **

9

1

17

3

37 **

9

2

6

6

37 **

9

3

7

4

20,5 **

16

4

24

4

59 5 **

16

2

28

2

47 5 **

16

3

18

9

98 **

16

4

11

4

25,5 **

16

5

12

3

21 **

p gt; 0,05.
p lt; 0,01.
Нет критического значения.

ный в цитогенетике развития человека. Тем не менее, он позволил установить различия в размерах гетерохроматиновых блоков хромосом 1, 9 и 16 в клетках хориона по сравнению с клетками собственно эмбриональных тканей и тенденцию к уменьшению линейных размеров этих блоков с 6-й по 20-ю неделю внутриутробного развития.
Результаты морфометрического анализа в целом хорошо согласуются с данными по структурно-функциональной организации хромосом, полученными с помощью других, более чувствительных и более специфичных методов (см. раздел 10.3, 10.4). Наличие крупных и, соответственно, менее спирализованных блоков гетерохроматина в ци- тотрофобласте хориона ранних зародышей человека хорошо согласуется с их гипометилированным состоянием в клетках цитотрофобласта и может свидетельствовать в пользу наличия функционально активных «ранних» генов в гетерохроматиновых районах этих хромосом. Выявленная в ходе эмбрионального развития тенденция к уменьшению размеров гетерохроматиновых блоков, которое сопровождается их конденсацией и метилированием, подтверждается молекулярными и иммуноцитохимическими методами. Эти данные служат косвенным доказательством роли конститутивного гетерохроматина в инактивации «ранних» генов.